Abstract : The aim of our work was to develop fluorescence decay imaging and to demonstrate its utility in the study of macromolecular dynamics and the interactions between macromolecules in live cells. Our approach consisted of simultaneous time-correlated single photon counting (TCSPC) and characterisation of spatial localisation of emission area along a line. Monodirectional fluorescence decay imaging was obtained that was characteristic of fluorescence kinetics in different subcellular regions. Fluorescence anisotropy decays from a small subcellular volume (1 µm3) were also measured under a microscope in confocal mode. The results show that this technological approach is useful for investigating the biology of living cells. Endogenous fluorescent labelling of proteins was carried out by GFP or spectral mutants fusion. Protein-protein interactions were studied by measuring donor fluorescence lifetime diminution (heteroFRET) or fluorescence depolarisation kinetics (homoFRET). We demonstrated the formation of (i) heterodimers of the p45 protein of NF-E2 transcription factor with two partners in different subcellular compartments by heteroFRET, and (ii) herpes simplex type 1 thymidine kinase dimer. In the latter case, homoFRET was more efficient at demonstrating dimerisation than heteroFRET. Moreover, measurement of ethidium fluorescence anisotropy decay demonstrated that DNA torsional dynamics, are restricted inside non-perturbed chromatin. Further developments in bidimensional and tri-dimensional imaging are promising.
Résumé : Le but de notre travail est de développer une imagerie des déclins de fluorescence et d'en démontrer les potentialités pour l'étude de la dynamique macromoléculaire et des interactions entre macromolécules en cellules vivantes. Notre approche repose sur la mesure de la corrélation temporelle de photons uniques de fluorescence (TCSPC) simultanément à la détermination de la localisation spatiale (le long d'une ligne) de la région d'émission. Des images monodirectionnelles de déclins de fluorescence ont ainsi été obtenues représentant la cinétique de fluorescence en différentes régions subcellulaires. Nous avons également mis au point la mesure de déclins d'anisotropie de fluorescence provenant d'un petit volume subcellulaire (1 µm3) sous microscope en mode confocal. Les résultats présentés dans ce mémoire démontrent l'intérêt de cette approche technologique pour des problématiques de biologie cellulaire. Le marquage fluorescent endogène de protéines a été réalisé en les fusionant à la GFP ou un de ses variants spectraux. Les interactions protéine-protéine ont été étudiées soit par hétéroFRET en mesurant la diminution de la durée de vie de fluorescence du chromophore donneur, soit par homoFRET en mesurant la cinétique de dépolarisation de la fluorescence. Nous avons mis en évidence (i) la formation d'hétérodimères de p45 du facteur de transcription NF-E2 avec deux partenaires dans différents compartiments subcellulaires par hétéroFRET, et (ii) l'homodimérisation de la thymidine kinase du virus de l'herpès simplex type 1 de façon plus concluante par homoFRET que par hétéroFRET. Par ailleurs, la mesure des déclins d'anisotropie de fluorescence de l'éthidium comme sonde de la dynamique torsionnelle de l'ADN a révélé l'existence d'une très forte restriction de cette dynamique dans la chromatine non perturbée. Les développements supplémentaires de notre système pour une imagerie bi-dimensionnelle puis tri-dimensionnelle sont prometteurs.